小鼠肺血管內(nèi)皮細胞（PECs）是肺部血管的關鍵組成部分，對肺循環(huán)的穩(wěn)定和氣體交換功能具有重要作用。研究肺血管內(nèi)皮細胞有助于了解肺部疾病的機制，如肺動脈高壓、肺水腫及其它血管相關疾病。本文簡要介紹了小鼠肺血管內(nèi)皮細胞的分離與培養(yǎng)方法。

　　一、材料與設備

　　1.動物模型：健康C57BL/6小鼠（8-12周齡，雄性或雌性均可）

　　2.細胞培養(yǎng)基：EndothelialCellMedium（ECM），或含有10%胎牛血清（FBS）、1%抗生素（青霉素/鏈霉素）的DMEM/F-12混合培養(yǎng)基

　　3.試劑與工：胰蛋白酶、磷酸鹽緩沖液（PBS）、含膠原酶和DNA酶的消化液、離心管、培養(yǎng)皿、無菌操作臺

　　二、小鼠肺血管內(nèi)皮細胞的分離步驟

　　1.動物麻醉與處死：使用異氟烷麻醉小鼠，通過頸部脫臼處死。之后迅速將小鼠胸腔暴露，并剪開胸腔，暴露出雙側(cè)肺臟。

　　2.肺臟灌注：在肺動脈處插入針頭，通過心臟將1×PBS緩沖液注入肺臟，進行灌注清洗，去除肺臟表面的血液。此步驟有助于減少血液中的紅細胞對細胞分離的干擾。

　　3.肺組織消化：將灌注清洗后的肺組織剪碎，放入含有膠原酶（1mg/mL）和DNA酶（20U/mL）的消化液中，37℃下消化30-45分鐘。消化過程中輕輕吹打以促進組織分解。

　　4.細胞過濾與收集：消化后，將細胞懸液通過70μm細胞過濾網(wǎng)過濾，去除未完全消化的組織塊。收集濾液，加入PBS進行多次離心洗滌（500×g，5分鐘），去除消化液和雜質(zhì)。

　　5.細胞培養(yǎng)：將分離得到的細胞重新懸浮在培養(yǎng)基中，并接種于培養(yǎng)皿（T25或更大培養(yǎng)瓶）。使用含10%FBS的ECM培養(yǎng)基，置于37℃、5%CO?的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

　　三、小鼠肺血管內(nèi)皮細胞的鑒定

　　1.形態(tài)觀察：在培養(yǎng)初期，血管內(nèi)皮細胞呈典型的多角形或長梭形，生長為單層鋪展的細胞。

　　2.免疫熒光染色：使用血管內(nèi)皮細胞特異性標志物進行鑒定，如抗-CD31、抗-VE-cadherin、抗-vWF抗體。通過免疫熒光染色和顯微鏡觀察，驗證細胞為內(nèi)皮細胞。

　　3.功能鑒定：細胞形成的血管樣結(jié)構(gòu)、白細胞黏附、流動性測試等也可作為功能鑒定方法。

　　四、培養(yǎng)注意事項

　　1.培養(yǎng)環(huán)境：維持細胞在37℃、5%CO?環(huán)境下生長。定期更換培養(yǎng)基，通常每2-3天一次，確保細胞的營養(yǎng)供給。

　　2.細胞傳代：當細胞密度達到80%-90%時，可用0.25%胰蛋白酶處理進行傳代。傳代時應盡量避免過度操作，保持細胞的良好狀態(tài)。

　　3.污染控制：在整個操作過程中，嚴格遵守無菌操作，防止細菌、真菌等污染，影響細胞的生長與實驗結(jié)果。

　　小鼠肺血管內(nèi)皮細胞的分離與培養(yǎng)技術是研究肺血管生理及病理的基礎方法。通過適當?shù)墓嘧?、消化和細胞分離手段，可以獲得純度較高的肺血管內(nèi)皮細胞，為相關疾病模型的建立及藥物篩選提供了重要的實驗平臺。在實際應用中，細胞培養(yǎng)環(huán)境和操作細節(jié)對實驗結(jié)果至關重要，需謹慎操作與優(yōu)化。